• wyizolowana ze szczepu E.coli niosącego gen polimerazy szczepu Thermus aquaticus,
• aktywność polimerazy 5'-3' i niska 5'-3' egzonukleazy,
• nie ma aktywności naprawczej 3'-5',
• współczynnik błędu 2.2 x 10^-5,
• termostabilność: wytrzymuje temp. do 95⁰C ponad 40 min.,
• zastosowanie: PCR, PCR fragmentów DNA do 5 kb oraz do klonowania, sekwencjonowanie DNA, znakowanie DNA izotopowe i nieizotopowe,

• wyizolowana ze szczepu Thermus aquaticus YT1,
• aktywność polimerazy 5'-3' i 5'-3' egzonukleazy,
• nie ma aktywności naprawczej 3'-5',
• współczynnik błędu 2.2 x 10^-5,
• termostabilność: 50% po 40 min. w 95⁰C,
• zastosowanie: do amplifikacji sekwencji bakteryjnego DNA homologicznego do sekwencji znajdujących się w E. coli, sekwencjonowanie DNA, znakowanie DNA izotopowe i nieizotopowe,
• dostępna także z BSA do zanieczyszczonych próbek,

• wysoce wydajna amplifikacja złożonych kompleksów matrycowego DNA,
• krótki czas aktywacji: tylko 4 minuty!
• wysoka specyficzność PCR: zredukowanie do minimum tworzenie dimerów przez primery oraz mispriming
• podwyższona czułość rekacji PCR
• dogodna pokojowa temperatura przygotowywania PCR dzięki dodaniu do reszt aminkwasowych specyficznych, termolabilnych grup blokujących,
• produkty reakcji zawierają końce 3'-dA

zastosowanie:

• hot-start PCR,
• amplifikacja dużych fragmentów: aż do 3 kb
• RT-PCR,
• real-time PCR,
• multiplex PCR,
• amplifikacja DNA typu "low copy",
• generacja produktów PCR do klonowania TA,

• chemicznie zmodyfikowana polimeraza hot-start zapewnia wydajny i szybki start reakcji PCR,
• wysoce specyficzna - zredukowane efekty błędnego przyłączania primerów oraz tworzenia struktur primer-dimer,
• udoskonalona czułość PCR,
• dogodna pokojowa temperatura przygotowywania PCR dzięki dodaniu do reszt aminkwasowych specyficznych, termolabilnych grup blokujących,
• generowanie produktów PCR z końcami 3'-dA,

zastosowanie:

• hot-start PCR,
• high throughput hot-start PCR
• RT-PCR
• real-time PCR,
• multiplex PCR,
• amplifikacja DNA typu "low copy",
• generacja produktów PCR do klonowania TA,
• wysoce specyficzna amplifikacja złożonego DNA genomowego oraz cDNA,

• katalizuje wysoce procesywną syntezę DNA na zasadzie podstawienia pojedynczej nici. Posiada aktywność egzonukleazy 3'->5' działającej w sposób uprzywilejowany na pojedynczej nici DNA,
• wyizolowana ze szczepu E.coli niosącego gen 2 faga Bacillus subtilis - phi29,
• posiada najwyższą aktywność w reakcji podstawiania nici spośród wszystkich znanych polimeraz,
• zastosowanie: izotermalna amplifikacja DNA przy wykorzystaniu metody: amplifikacja kolistego DNA typu toczącego się koła, wielokrotne podstawianie nici, amplifikacja typu protein-primed DNA bazująca na mechanizmie replikacji DNA faga Phi29, sekwencjonowanie DNA,

• wysoce termostabilna polimeraza DNA - 95% aktywności po 2 h w 95⁰C,
• wyizolowana ze szczepu E.coli niosącego gen polimerazy szczepu Pyrococcus furiosus,
• posiada aktywność naprawczą egzonukleazy 3'-5' i współczynnik błędu niższy niż polimeraza Taq,
• zastosowanie: PCR - 8x dokładniejsza od polimerazy Taq, klonowanie produktów PCR na tępo, mutageneza miejscowo-specyficzna,
• dostępna natywna lub rekombinowana,

• Optymalna temperatura aktywacji 45-50°C.
• Wysoce termostabilna, może być wykorzystywana nawet do 60°C.
• Odpowidnia do syntezy pełnej długości cDNA nawet do 13 kb.
• Włącza zmodyfikowane nukleotydy.
• Źródło E. coli

Zastosowanie
• Synteza pierwszej nici cDNA.
• RT-PCR.
• Synteza cDNA do klonowania.
• RT-PCR matrycy bogatej w GC oraz matrycy o wysokim stopniu drugorzędowej struktury.
• Synteza znakowanych sond cDNA.
• Analiza RNA przez wydłużanie starterów.

• M-MuLV jest RNA- i DNA- zależną DNA polimerazą. Jako matrycę wykorzystuje zarówno RNA jak i DNA. Posiada aktywność RNazy H,
• wyizolowana z E. coli z wklonowanym fragmentem genu pol kodującego odwrotną transkryptazę Moloney Murine Leukemia Virus
• zastosowanie: synteza pierwszej nici cDNA, znakowanie DNA, analiza RNA

• rekombinowana odwrotna transktyptaza różniąca się od M-MuLV RT strukturą i właściwościami katalitycznymi,
• oczyszczona ze szczepu E.coli, niosącego plazmid z genem pol wirusa M-MuLV (Moloney Murine Leukemia Virus),
• aktywność polimerazy RNA i DNA zależnej,
• aktywność rybonukleazy H, specyficznej do RNA i hybryd RNA-DNA (niższa niż odwrotnej transkryptazy AMV - Avian Myeloblastosis Virus),
• zastosowanie: synteza pierwszej nici cDNA - tak otrzymane cDNA może być wykorzystane do sekwencjonowania, znakowanie DNA, analiza DNA poprzez wydłużanie primera,

• rekombinowana odwrotna transktyptaza różniąca się od M-MuLV RT strukturą i właściwościami katalitycznymi,
• oczyszczona ze szczepu E.coli, niosącego plazmid z genem pol wirusa M-MuLV (Moloney Murine Leukemia Virus),
• brak aktywności rybonukleazy H (niższa niż odwrotnej transkryptazy AMV - Avian Myeloblastosis Virus),
• aktywność polimerazy RNA i DNA zależnej
• odpowiednia do długich matryc mRNA (do 13 kb),
• zastosowanie: synteza pierwszej nici cDNA- tak otrzymane cDNA może być wykorzystane do sekwencjonowania, znakowanie, analiza DNA poprzez wydłużanie primera,

• oczyszczona z E.coli,
• katalizuje syntezę DNA 5'-3',
• posiada aktywność naprawczą 3'-5' i egzonukleazy 5'-3',
• zastosowanie: synteza drugiej nici cDNA w połączeniu z RNazą H, znakowanie DNA poprzez nick-translation w połączeniu z DNazą I,

• katalizuje syntezę DNA 5'-3',
• posiada aktywność naprawczą 3'-5', większą w stosunku do DNA jednoniciowego niż dwuniciowego,
• nie ma aktywności egzonukleazy 5'-3',
• zastosowanie: synteza drugiej nici w mutagenezie miejscowo specyficznej, wypełnianie lepkich końców, klonowanie fragmentów PCR, synteza znakowanych sond DNA,

• katalizuje syntezę DNA 5'-3',
• ma aktywność egzonukleazy 3'-5', 1000-krotnie wyższą niż fragment Klenowa; hydrolizuje jedno- i dwuniciowe DNA,
• podjednostka 84 kDa jest kodowana przez gen 5 faga T7, podjednostka 12 kDa (tioredoksyna) kodowana przez gen trxA E.Coli,
• zastosowanie: synteza drugiej nici cDNA, wypełnianie lepkich końców, znakowanie końca 3'-DNA, synteza nici komplementarnej w mutagenezie miejscowo specyficznej,

• rozpoznaje specyficznie sekwencje promotorowe faga T7, T3 lub SP6,
• zastosowanie: tworzenie sond RNA do hybrydyzacji, sekwencjonowanie DNA genomowego, tworzenie matryc do badania: translacji in vitro, drugorzędowej struktury RNA,

• polimeraza Pwo (Pyrrococus woesei) z powodzeniem zastępuje polimerazę Taq,
• wysoka procesywność 5'-3' z aktywnością egzonukleolityczną 3'-5' (proof-reading).
• bez aktywności egzonukleazy w kierunku 5'-3',
• większa stabilność cieplna oraz 10-krotnie większa wierność (w porównaniu z Taq polimerazą),
• polimeraza tworzy tępe końce produktów PCR (ułatwia klonowanie),
• zastosowanie w charakteryzowaniu rzadkich mutacji i polimorfizmu allelicznego, znakowaniu DNA modyfikowanymi nukleotydami oraz klonowaniu,

• dzięki nieobecności N-terminalnej części białka (5' delecja) enzym jest jeszcze bardziej stabilny (nawet w temperaturze 99 C!) i bardziej aktywny od tradycyjnej Taq polimerazy,
• brak aktywności egzonukleazy w kierunku 5'-3',
• idealna do PCR, sekwencjonowania i wydłużania primerów (matryca do 4kb),
• doskonałe narzędzie w genomice,

• odwrotna transkrypcja i PCR dzięki jednemu enzymowi,
• odporna na dłuższe cykle w temperaturze 95 C, wysoka specyficzność!,
• aktywność polimerazy w obecności jonów Mg,
• aktywność odwrotnej transkryptazy w obecności jonów Mn,
• wysoka temperatura polimeryzacji DNA na matrycy RNA pozwala na uniknięcie problemów związanych z silną, drugorzędową strukturą RNA,
• aktywność odwrotnej transkryptazy nie jest związana z aktywnością Razy H,
• zastosowanie w RT-PCR fragmentów o długości do 1000 bp, znakowanie DNA radionukleotydami, digoksygeniną, biotyną, wydłużanie primerów,
• wyizolowana z E.coli niosącego gen HB-8 Thermus termophilus,
• dostarczana z buforem chelatującym, buforem reakcyjnym, roztworami chlorku magnezu i manganu,

• idealna do transkrypcji małych fragmentów RNA, wydłużania primerów, znakowania końców 3' DNA, sekwencjonowania RNA oraz dideoksysekwencjonowania DNA,
• 5'-3' aktywność polimerazy zależna od primerów (DNA lub RNA jako wzorzec),
• 3'-5' aktywność Razy H (degraduje hybrydy RNA-DNA),
• dostarczana z buforem reakcyjnym 10x,

Polimeraza Sure Prime™ Taq

• polimeraza Sure Prime™ Taq do HOT START PCR to termostabilna Polimeraza DNA oczyszczona ze szczepu Thermus aquaticus, którą zmodyfikowano chemicznie. Wprowadzenie termowrażliwych grup blokujących reszty aminokwasowe polimerazy Sure Prime™ Taq powoduje, że enzym jest nieaktywny w temperaturze pokojowej,
• polimeraza Sure Prime™ Taq jest nieaktywna na wstępnym etapie reakcji PCR, aż do momentu początkowej denaturacji. Zapobiega to wydłużaniu niespecyficznych hybrydów primer - primer oraz primer - matryca,
• 15-minutowa inkubacja w temp. 95°C rozpoczyna proces aktywacji polimerazy przez odwrócenie modyfikacji chemicznej. Podczas samej reakcji PCR w każdym z cykli PCR zachodzi dodatkowa aktywacja enzymu, tak więc ilość aktywnej polimerazy wzrasta wraz z ilością powielanego DNA,
• na wstępnym etapie PCR składniki mieszaniny reakcyjnej są wystawione na działanie temperatur niższych niż ta wymagana do elongacji. Może wtedy dojść do oligomeryzacji primerów i ich niespecyficznego przyłączania. To zmniejsza czułość i wydajność reakcji PCR,
• użycie polimerazy Sure Prime™ Taq zapobiega tworzeniu się niespecyficznych produktów PCR, zwiększa czułość i wydajność reakcji oraz zmniejsza tło,
• polimeraza Sure Prime™ Taq jest dostępna w stężeniu 5U/ľl z buforem 10 x stężonym (bufor nie zawiera MgCl₂, 50 mM roztwór MgCl Taq 2 dostępny jest oddzielnie),

• rekombinowana
• nie ma aktywności naprawczej 3'-5'
• zastosowanie: PCR, RT-PCR, sekwencjonowanie DNA, znakowanie DNA
• parametry - zobacz Tabela 1

• wyizolowana z Pyrococcus abyssi,
• 40-krotnie dokładniejsza od Taq DNA polimerazy,
• wysoce termostabilna,
• nie degraduje końca 3' primerów,
• idealna do high fidelity PCR,
• amplifkacja do 6 kb DNA genomowego i 18 kb DNA fagowego,
• zachowuje 80% aktywności po 5h inkubacji w 95C i 50% aktywności po 5h inkubacji w 100C,

• rekombinowana, skrócona forma polimerazy Taq (delecja części N-terminalnej)
• nie ma aktywności egzonukleazy 5'-3' (nie degraduje primerów od końca 5')
• bardziej termostabilna niż zwykła polimeraza Taq
• wolna od RNaz, endo- i egzonukleaz
• zastosowanie: PCR i sekwencjonowanie DNA z koniecznością wielokrotnej amplifikacji
• parametry - zobacz Tabela 1

* koncentracja Q-Bio Taq jest w jednostkach Klentaq.1u Klentaq = 4u DNA Polimerazy Taq

• mieszanina polimeraz Taq i Tfu,
• większa wierność, działanie naprawcze,
• większa wydajność reakcji, potrzebne mniej matrycy,
• możliwy PCR fragmentów do 21 KB z dużą wiernością, niższy współczynnik błędu, niż polimerazy Taq,
• zastosowanie: PCR długich fragmentów oraz małej ilości kopi matrycy,
• parametry - zobacz Tabela 1